Мирамистин для обработки РАН

Лето – очень активная пора. Это время спортсменов и дачников, а еще, к сожалению, повышенного травматизма. Чем будем залечивать раны?

Содержание

Первым делом обработка!

Первым делом обработка!

При небольших царапинах ссадинах и порезах нет необходимости обращаться к врачам. Их можно обработать самостоятельно. Но при этом ни в коем случае не стоит относиться к даже самым маленьким ранкам несерьезно. Ведь любое повреждение кожного покрова – это открытые ворота для попадания в наш организм различных патогенных бактерий. Избежать развития инфекции и воспаления, а также ускорить процесс выздоровления, безусловно, помогут грамотная первичная обработка и в дальнейшем правильно подобранная терапия.

Наиболее популярными и бюджетными средствами многие годы продолжают оставаться такие антисептические средства, как перекись водорода, бриллиантовый зеленый и хлоргексидин.

Перекись водорода

Это средство останавливает кровь и дезинфицирует рану. В аптеке традиционно представлено стандартным 3 % раствором. Кислород, выделяемый при контакте с раневой поверхностью, уничтожает все микробы, попадающиеся ему на пути. Применяется как у взрослых, так и у детей, но только для обработки неглубоких порезов.

Хлоргексидин

В основе хоргексидина биглюконат. Выпускается в виде водного или спиртового раствора. Хотя в аптеке обычно присутствует 0.5 % водный, наиболее подходящий для обработки ран и различных интимных омовений.

Мирамистин

Примыкает к хлоргексидину мирамистин. Многие из посетителей аптек вообще свято верят в то, что мирамистин − это более дорогой оригинал, а хлоргексидин – его гораздо более дешевая копия. Хотя, разумеется, это не так. Химическое название мирамистина бензилдиметиламмоний хлорид моногидрат. Он менее токсичен и обладает более широким спектром действия по сравнению со своим дешевым собратом. Выпускается в виде 0,01 % раствора в нескольких объемах – 50 мл, 150 мл и 500мл.

Йод и зеленка

5% раствор йода и 1-2% растворы зеленки (или бриллиантового зеленого) используют для обработки краев раны. Прекрасное противомикробное действие при полном отсутствии кровоостанавливающего эффекта. Выпускается в виде раствора и маркеров, позволяющих при использовании избежать экзотической окраски рук.

Бактерицидные присыпки

Самый известный и востребованный представитель этой группы − Банеоцин. Это комбинированный антимикробный препарат на основе неомицина и бацитрацина, усиливающих эффект друг друга. Банеоцин эффективен и безопасен, подходит даже для детей с первых дней жизни.

Мази, кремы, пасты, гели

Для каждой стадии раневого процесса рекомендуется своя лекарственная форма. На свежую рану накладывают гель. А на сухую поверхность − мазь.

Наиболее популярные из них: различные мази и кремы с декспантенолом, например, Д-пантенол и Бепантен; солкосерил, актовегин, банеоцин и левомеколь.

Салфетки

Стоит особо отметить антимикробные салфетки, которые во многих аптеках представлены в самом широком ассортименте. К примеру, российский бренд «Активтекс» готов предложить всем страждущим салфетки с самой разной пропиткой, которые помогут и на начальном этапе обработки раны, и в дальнейшем при ее заживлении.

Активтекс-АКФ – с аминокапроновой кислотой и фурагином, кровоостанавливающий эффект.
Активтекс Ф – с фурагином, прекрасный антибактериальный эффект.
Активтекс-Х − с хлоргексидином, антибактериальный эффект.
Активтекс ХФ – содержат сразу два компонента: Хлоргексидин и Фурагин, которые усиливают действие друг друга, что позволяет использовать для обработки более глубоких ран, а также при наличии запущенной стадии воспалительного процесса, сопровождающегося активизацией процессов гниения.
Активтекс-ХЛ – с хлоргексидином и лидокаином, обезболивающий и антимикробный эффект.
Активтекс ФЛ – в состав входят фурагин, оказывающий противовоспалительный эффект и лидокаин, местный анестетик.
Активтекс Хвит – в составе хлоргексидин, витамины Е и С. Данный тип салфеток позволяет ускорять процессы регенерации, а также способствует заживлению мокнущих и гниющих длительное время ран.
Активтекс Хвит Комплекс – в составе хлоргексидин, рутин и витамин С. Противовоспалительное и обеззараживающее воздействие подкрепляется благоприятными свойствами рутина, позволяющего укрепить мембранные стенки клеток, снижая их проницаемость, и ускоряя процесс заживления.
Активтекс ХХФ – в составе хлорофиллипт и фурагин. Способствуют снижению воспаления, отечности и покраснения, что сочетается с ускоренной регенерацией поврежденных участков кожи.
Активтекс ФОМ – в составе фурагин и облепиховое масло. Эти два компонента усиливают друг друга, а также позволяют получать равномерное заживление раны без формирования коллоидных рубцов.

Рану предварительно обрабатывают антисептиком, после чего накладывают непосредственно саму салфетку,смоченную физраствором.

N.B.! Салфетки предназначены для одноразового использования. Повторное их применение недопустимо!

Автор статьи: Светлана Шилькова

Опубликовано в журнале:
» Дерматовенерология. Косметология » № 2 (7), 2014

P.M. Абдрахманов, P.P. Халиуллин, А.Р. Абдрахманов
ГБОУ ВПО «Казанский Государственный медицинский университет Минздрава РФ», г. Казань

Резюме: В данном клиническом исследовании, согласно принципам доказательной медицины, показана микробиологическая и клиническая эффективность местного применения препарата Мирамистин®, раствор для местного применения в комплексном лечении хронических уретритов, ассоциированных с инфекциями, передаваемыми половым путем

Ключевые слова: препарат Мирамистин®, хронический уретрит, инфекции, передаваемые половым путем.

R.M. Abdrahmanov, R.R. Haliullin, A.R. Abdrahmanov
Kazan State Medical University

Актуальность проблемы

Патогенез воспалительного процесса в мочеиспускательном канале во многом зависит от состояния его слизистой оболочки и, в частности, от целостности эпителия, выстилающего уретру, а также от наличия на ее стенках достаточной по количеству и соответствующей по качеству слизи, вырабатываемой уретральными железами. При нарушениях целостности слизистой оболочки уретры любой этиологии (микробной, механической, химической и др.) развивается воспалительная реакция на патологический агент, усугубляющаяся вторичной пиогенизацией очага воспаления патогенной или условно-патогенной микрофлорой.

Развитие воспаления уретры сопровождается увеличением проницаемости ее стенок для лейкоцитов, а также других клеточных и неклеточных факторов иммунитета, которые проникают в просвет мочеиспускательного канала и вместе с микроорганизмами, клетками слущенного эпителия и слизью, в зависимости от обстоятельств патологического процесса, формируют выделения серозного, слизистого, гнойного или слизисто-гнойного характера. Активность воспалительного процесса в основном определяется непосредственно травмирующим фактором, степенью его агрессии по отношению к слизистой оболочке. Еще следует отметить и фоновое состояние слизистой оболочки уретры к моменту ее травматизации тем или иным повреждающим фактором. Это касается в первую очередь состояния так называемой колонизационной резистентности, т.е. способности слизистой оболочки противостоять ее колонизации различными микроорганизмами. Кроме того, свою лепту в воспаление любой этиологии вносит и собственная условно-патогенная микрофлора или даже нормобиота уретры, которые также участвуют в нем наравне с другими участниками, нередко являясь инициаторами перманентного, хронического течения воспалительного процесса.

В зависимости от длительности существования воспалительного процесса в мочеиспускательном канале различают свежий и хронический уретриты. В течение многих лет клиницистами эмпирически были определены сроки свежего (от момента заражения до двух месяцев течения заболевания) и хронического (более двух месяцев после предполагаемой даты заражения) уретритов.

Вариантами клинического течения свежего воспалительного процесса в уретре могут быть острый, подострый, торпидный, а хронического — хронический рецидивирующий типы уретритов, соответственно, определяющие и симптомы заболевания в каждом конкретном случае.

Острый уретрит проявляется, как правило, резким болевым симптомом, наличием обильных гнойных или слизисто-гнойных выделений, значительно усиливающихся при мочеиспускании. При осмотре обнаруживаются сильно гиперемированные, отечные губки уретры, пальпация губчатого тела вызывает болезненные ощущения в мочеиспускательном канале. Чаще всего острый уретрит проявляется поражением передней уретры, поэтому видимые патологические изменения мочи определяются в ее в первой порции — мутная моча, содержащая нити слизи или «хлопья».

Подострый уретрит характеризуется теми же симптомами, что и острый, однако более низкая степень воспалительных изменений мочеиспускательного канала приводит к изменению качественного субъективного восприятия боли, которая в данном случае большинством больных воспринимается, как зуд и дискомфорт в уретре. Количество выделений значительно меньше, чем при остром течении заболевания. Характер выделений чаще слизисто-гнойный. Изменения в моче также менее выражены.

Выше были описаны привычные для врача типы воспаления мочеиспускательного канала. Однако сегодня в любой практической деятельности дерматовенерологи и урологи все чаще сталкиваются с течением патологических процессов в уретре, сопровождающихся минимальной клинической симптоматикой либо протекающих с полным ее отсутствием, что обусловлено крайне вялым течением воспалительного процесса в органах мочеполовой системы человека .

Поэтому в настоящее время большое значение в клинической диагностике инфекций, передаваемых половым путем (ИППП), придается инструментальным и аппаратным методам диагностики, в частности эндоскопии , позволяющим прижизненно определять различные патологические изменения тканей мочеиспускательного канала, санация которых требует активного местного лечебного воздействия на пораженные ткани.

К основным принципам терапии в настоящее время можно отнести следующие:

воздействие на все звенья этиологии и патогенеза заболевания;
анализ и учет активности, категории и степени распространенности процесса;
применение комплекса терапевтических мероприятий .

Терапия хронического уретрита остается до настоящего времени сложной задачей. Медикаментозная терапия осложняется тем, что лекарственные препараты плохо проникают в инфильтративно-склеротические измененные участки воспаленной ткани и не достигают там необходимой терапевтической концентрации, что в большинстве случаев требует использования местной терапии, например применения препарата мирамистин, в виде инстиляций. .

В связи с этим нами оценена эффективность комплексного лечения уретритов с местным применением препарата Мирамистин®.

Мирамистин является лекарственным препаратом антисептического действия, был разработан и разрешен к медицинскому использованию (регистрационный номер PN 001926/01 от 13.12.2007 г.). По составу он относится к однокомпонентным препаратам, по химическому составу представляет бензилдиметил аммоний хлорид моногидрат.

Фармакологическое действие выражено бактерицидным эффектом в отношении аэробных и анаэробных бактерий в виде монокультур и микробных ассоциаций, включая госпитальные штаммы с полирезистентностью к антибиотикам. Действует на возбудителей заболеваний, передающихся половым путем, оказывает противовирусное действие на вирусы герпеса, гриппа, иммунодефицита человека, гепатита и др.

Оказывает противогрибковое действие, включая грибковую микрофлору с резистентностью к химиотерапевтическим препаратам.

Важной особенностью мирамистина является его местное иммуноадьювантное действие, формирующее усиление защитных реакций и регенераторных процессов, вследствие активации механизмов неспецифического иммунного ответа.

Основой биологического действия препарата мирамистин его прямое действие на наружные мембраны клеток микроорганизмов. Преобладающим механизмом его влияния является гидрофобное взаимодействие молекулы мирамистина с липидными комплексами наружных мембран микроорганизмов, приводящее к их фрагментации и разрушению. Одновременно неполярная часть молекулы мирамистина, погружаясь в гидрофобную часть мембраны, разрушает надмембранный слой, разрыхляет мембрану, повышает ее проницаемость для крупномолекулярных веществ и, кроме того, изменяет энзиматическую активность клетки, угнетая ферментативные системы, т.е. ее жизнедеятельность. Мирамистин на клетки человека действует значительно слабее, поскольку липидные радикалы этих клеток имеют значительно большую длину, чем радикалы мембран микроорганизмов и поэтому гидрофобные взаимодействия с молекулой препарата не выражены.

Объем и методы исследования

Нами проведено обследование и лечение 150 пациентов с установленным диагнозом хронического уретрита (литреиты, перилитреиты, морганииты, наличие переходного инфильтрата колликулиты и т.д.) ассоциированного с различными видами ИППП, (виды ИППП определены далее в тексте) которые были случайным образом разделены на 2 группы: основную — 110 пациентов и группу сравнения — 40 пациентов.

В обеих группах после установления топического диагноза, общую медикаментозную терапию проводили одинаково стандартно в соответствии с «Клиническими рекомендациями по ведению больных инфекциями, передаваемых половым путем и урогенитальными инфекциями» Российского общества дерматовенерологов и косметологов . Дозировки лекарственных препаратов указаны в соответствии с инструкцией и показаниями и назначению, утвержденными в Российской Федерации. Выбор препаратов проводился с учетом анамнестических данных (аллергическая реакция, индивидуальная непереносимость препаратов, наличие сопутствующих инфекций), и состояния резистентности возбудителя к антибактериальным препаратам.

Лечение гонококковой инфекции проводили цефтриаксоном 250 мг однократно внутримышечно или цефиксимом 400 мг однократно внутрь.

Лечение микоплазменной инфекции проводилось по общепринятым показаниям следующими препаратами: доксициклин по 100 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 10 дней, или джозамицином по 500 мг внутрь 3 раза в сутки в течение 10 дней, или азитромицином 500 мг внутрь в первый день, далее по 250 мг в сутки в течение 4 дней. Хламидийную инфекцию лечили: доксициклин по 100 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 7 дней, или азитромицин 1,0 г однократно, или джозамицин по 500 мг внутрь 3 раза в сутки в течение 7 дней.

Лечение трихомонадной инфекции проводилось метронидазолом 2,0 г. однократно внутрь, или тинидазолом 2,0 г внутрь однократно, или орнидазолом 1,5 г. внутрь однократно.

Лечение гарднереллеза проводилось метронидазолом 500 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 7 дней или орнидазолом 500 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 5 дней.

Для лечения вирусной инфекции использовали препараты ацикловира в различных дозах в соответствии с клиническими проявлениями.

В основной группе, дополнительно, в качестве местной терапии использовали препарат Мирамистин®, в виде инстилляцией в уретру, в объеме 3-5 мл с экспозицией 3 минуты ежедневно 1 раз в сутки № 10 с последующим воздержанием от акта мочеиспускания в течение 2-3 часов.

Полученные результаты

Результаты проведенного лечения оказались следующими: полная элиминация возбудителей наблюдалась в основной группе при уреаплазменной, гонококковой, трихомонадной, гарднереллезной, кандидозной и смешанной инфекциях. Возбудители определялись по 1 случаю при хламидийной, микоплазменной, герпетической и цитомегаловирусной инфекции. Процент неэффективности лечения в основной группе составил 3,6%, а в группе сравнения — 15,0%.

Таким образом, соотношение неудач этиологического излечения составил, более 1:4 в исследуемых группах (3,6% в основной и 15,0% в группе сравнения). Табл.№1.

Таблица 1. Микробиологический состав биопроб у больных воспалительными заболеваниями уретры

Вид ИППП	Группы
	Основная n=110				Сравнение n=40
	До лечения		После лечения		До лечения		После лечения
	абс	%	абс	%	абс	%	абс	%
Chlamydia trachomatis	10	9,1	1		3	7,5	1
Mycoplasma hominis	16	14,6	1		6	15	2	2,5
Ureaplasma urealyticum	18	16,4			7	17,5	1
Neisseria gonorrhoeae	4	3,6			1
Trichomonas vaginalis	12	10,9			4	10,0
Gardnerella vaginalis	10	9,1			4	10,0
Herpes simplex virus	5	4,6			2	5,0	1
Candida albicans	6	5,5			2	5,0
Cytomegalovirus	3	2,7			1		1
Ассоциированные инфекции	26	23,7			10	25

Содержание лейкоцитов в одном поле зрения микроскопа после проведенного лечения группах было следующим: нормальное количество лейкоцитов в основной группе наблюдалось в 109 случаях (99,2%), в группе сравнения у 30 больных (75,0%) (за норму принимали количество лейкоцитов до 10 в поле зрения микроскопа при увеличении х630).

Изучая клинические проявления уретритов, вызванных инфекциями, передаваемыми половым путем, мы обращали внимание на характер выделений из мочеиспускательного канала. Установлено, что в подавляющем большинстве случаев выделения из уретры отсутствовали: в основной группе — в 95 из 110 (86,5%), в группе сравнения — 38 и 40 (95,0%). Слизистые выделения определялись у 11 (10,0%) в основной группе и у 1 в группе сравнения. Слизисто-гнойные выделения имелись у 4 пациентов основной группы (3,6%) и у 1 в группе сравнения. Необходимо отметить отсутствие гнойных выделений в обеих группах. После проведенного лечения в основной группе у 109 пациентов выделения из уретры отсутствовали, определяя 99,2%, в группе сравнения — у 39 из 40 (97,5%).

Из клинических проявлений обращали внимание также на наличие и характер воспалительного процесса в области наружного отверстия уретры.

Заключение

Результаты проведенного исследования показали, что использование препарата Мирамистин в качестве местной терапии в комплексном лечении хронических уретритов, ассоцииров анных с инфекциями, передаваемыми половым путем, позволяет значительно повысить эффективность терапии, что подтверждается микробиологическими и клиническими данными. Препарат хорошо переносился пациентами, побочных и аллергических реакций не установлено, в некоторых случаях отмечалось кратковременное чувство жжения после введения препарата, которое проходило самостоятельно через 2-3 минуты и не требовало отмены препарата.

ЛИТЕРАТУРА

Сведения об авторах

Author information

Поступила 14.02.2017 г.

Принята к печати 12.12.2017 г.

ПРИМЕНЕНИЕ МИРАМИСТИНА И МЕТРОНИДАЗОЛА В ЛЕЧЕНИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ГНОЙНЫХ РАН

С. И. Тиганов ‘, А. Ю. Григорьян 2, Ю. Ю. Блинков 2, Т. А. Панкрушева 2, Е. С. Мишина 2, Л. В. Жиляева 2

1 Курская городская больница скорой медицинской помощи, Курск 305035, Российская Федерация

2 Курский государственный медицинский университет, Курск 305041, Российская Федерация

Цель исследования. Изучение процесса заживления экспериментальной раны при применении разработанной нами комбинации с мирамистином и метронидазолом в сравнительном аспекте с мазью «Левомеколь».

Материал и методы. Материалом для исследования послужил следующий состав: Раствор Мирамистина 0,01 % — 100,0 г, Метронидазол — 1,0 г, Натриевая соль карбоксиметилцеллюлозы — 4,0 г. Эксперимент был выполнен на 120 крысах-самцах породы Вистар, которые были разделены на 2 статистически однородные группы по 60 животных в каждой, всем подопытным моделировалась гнойная рана по методике П. И. Толстых. В контрольной группе местное лечение раны проводилось с помощью мази «Левомеколь», в опытной группе проводили лечение составом 1. Оценку течения раневого процесса производили с помощью планиметрического, микробиологического и гистологического методов исследования. Протоколирование данных и выведение животных из опыта осуществляли на 1-е, 3-и, 5-е, 8-е,10-е и 15-е сутки.

Результаты. Данные микробиологического исследования подтвердили высокую эффективность разработанной нами комбинации в отношении стандартных тест-штаммов микроорганизмов-возбудителей раневой инфекции. В результате планиметрического исследования было выявлено достоверное уменьшение площади ран в опытной группе по сравнению с контрольной на 10-е и 15-е сутки наблюдения, что указывает на более благоприятное течение процесса заживления в опытной группе. Применение в лечении гнойно-воспалительного процесса мягких тканей разработанной нами комбинации способствует скорейшему понижению микробной обсемененности ран, по сравнению с мазью «Левомеколь», что было отмечено на 8-е и 10-е сутки. После проведенного гистологического исследования было отмечено, что процессы регенерации и эпителизации протекали лучше в опытной группе по отношению к контролю.

Заключение. Таким образом, созданная нами комбинация с мирамистином и метронидазолом оказывает эффективное противомикробное действие в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, сокращает срок течения первой и второй фазы раневого процесса по сравнению с использованием стандартного средства.

Ключевые слова: гнойная рана, лечение ран, мирамистин, метронидазол, натриевая соль карбоксиметилцеллюлозы, мазь «Левомеколь». Для цитирования: Тиганов СИ, Григорьян АЮ, Блинков ЮЮ, Панкрушева ТА, Мишина ЕС, Жиляева ЛВ. Применение мирамистина и метронидазола в лечении экспериментальных гнойных ран. Сибирское медицинское обозрение. 2018;(1): 43-48. Б01: 10.20333/2500136-2018-1-43-48

THE USE OF MIRAMISTIN AND METRONIDAZOLE IN THE TREATMENT OF EXPERIMENTAL PURULENT WOUNDS

S. I. Tiganov ‘, A. Yu. Grigoryan 2, Yu. Yu. Blinkov 2, T. A. Pankrusheva 2, E. S. Mishina 2, L. V. Zhilyaeva 2

1 Kursk Municipal Ambulance Hospital, Kursk 305035, Russian Federation

2 Kursk State Medical University, Kursk 305041, Russian Federation

Введение

Острой проблемой хирургии в наше время является затруднение в лечении гнойных ран, что, без сомнения, связано с распространенностью гнойно-воспалительных процессов мягких тканей различной этиологии, высокой смертностью, значительными материальными расходами на лечение . По данным литературы, гнойные осложнения в структуре хирургических заболеваний составляют 35-45 %, а летальность достигает 25 % . В распоряжении врачей имеется обширный спектр различных методик лечения гнойно-воспалительных заболеваний мягких тканей . Несмотря на это, способ лечения ран под повязкой остается на сегодняшний день основополагающим благодаря простоте его применения, доступности и экономической выгоде . Наличие антибиотиков в средствах для местного лечения ран порой приводит к развитию резистентности у микроорганизмов, в связи с чем, в настоящее время уделяется большое внимание антисептикам . Одними из действенных антисептиков является мирамистин. Однако растворы при санации очага разводятся отделяемым из раны и теряют активность в течение 3-6 часов . В связи с этим сохраняется потребность в разработке новых комбинаций с антисептиками, иммобилизированными на основе, которая способна длительно высвобождать в рану активные компоненты, это продлевает их ранозаживляющую активность и сокращает частоту смены повязок. Для усиления формулы разработанной нами комбинации и профилактики развития анаэробной инфекции мы так же ввели в состав противомикробный препарат метро-нидазол, чья эффективность в отношении анаэробных возбудителей не вызывает сомнений.

Цель: изучение процесса заживления экспериментальной раны при применении разработанной нами комбинации с мирамистином и метронидазолом в сравнительном аспекте с мазью «Левомеколь».

Материал и методы

Материалом для исследования послужила комбинация, состав которой разработан коллектив ом Курского государственного медицинского университета.

В экспериментах in vitro изучали противомикроб-ную активность мази «Левомеколь» и изучаемого Состава 1. Было выполнено по 6 одномоментных исследований методом стандартных дисков на плотных питательных средах с использованием тест-штаммов St. aureus ATCC 6538-P, Вас. cereus ATCC 10702, E. coli ATCC 25922, Proteus vulgaris и Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, Candida albicans ATCC 885-653.

Эксперименты in vivo производились на 120 белых крысах-самцах породы «Вистар». Эксперимент выполнен в соответствии с Европейской конвенцией о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях (European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and Other Scientific Purposes, 18.03.1986).

Экспериментальным животным воспроизводилась гнойная рана по методу П. И. Толстых. Подопытные животные были разделены на 2 группы по 60 особей в каждой: в контрольной группе ежедневно производилась обработка ран с мазью «Левомеколь»; в опытной группе — Составом 1. Перевязки производили один раз в день, ежедневно в течение 14 суток.

При планиметрии раневого дефекта оценивались динамика уменьшения площади и скорости заживления.

Процент уменьшения площади ран (ПУП) от исходного размера вычисляли по формуле:

ПУП = X 100% (1) So

где S0 — исходный средний уровень площад и на начало лечения, мм2

S — средняя площадь ран на момент измерения, мм2.

Скорость заживления ран (СЗ), т.е. % уменьшения площади раны за сутки вычисляли по формуле:

СЗ =

ПУП1-ПУП0 Т

(2)

где ПУП1 — процент уменьшения площади ран от исходной на момент измерения;

ПУП0 — процент уменьшения площади ран при предыдущем измерении;

Т — число дней между измерениями.

Во время проведения стандартного бактериологического анализа определялась обсемененность раны микроорганизмами (КОЕ/1г ткани) путем посева фрагмента раны (с перерасчетом на один грамм веса) в чашки Петри с плотной питательной средой (агар).

Течение раневого процесса у подопытных животных анализировали с помощью гистологического метода (окраска гематоксилином и эозином). Протоколирование показателей и выведение из эксперимента животных осуществляли на 3-и, 5-е, 8-е, 10-е сутки от начала лечения. При морфометрическом исследовании микропрепаратов ран при увеличении х400, производили подсчет фибробластов, гранулоцитов, лимфоцитов и макрофагов до 100 клеток, полученные результаты отражали в процентах. Далее рассчитывали клеточный индекс (КИ) по формуле:

КИ=(Макрофаги+Фибробласты)/(Гранулоциты+-Лимфоциты) (3)

где клетки, расположенные в числителе, характеризуют репаративные процессы, а в знаменателе — выраженность воспалительных процессов.

Статистическую обработку проводили с использованием пакета Microsoft Excel 2010. Вычисляли средние величины количественных показателей (М) и среднюю ошибку средней (m). Распределение признаков определяли по критерию Шапиро-Уилка. Достоверность различий оценивали по критерию Манна-У-итни. Различия считались достоверными при р<0,05.

Результаты и обсуждение

Спектр антимикробного действия препаратов в отношении вышеописанных тест-штаммов представлен в таблице 1.

Таблица 1

Спектр антимикробного действия препаратов

(М±m)

Исследуемый состав Левомеколь (n=6) Состав 1 (n=6)

St. aureus ATCC 6538-P О 30,2±4,79 28,5±1,87

Вас. cereus ATCC 10702 21,7±3,01 27,0±2,19*

E. coli ATCC 25922 S ED s» 5 26,5±5,01 29,2±1,47

Proteus vulgaris m сц cl сц ro s 26,2±5,56 24,7±1,03

Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027 го m о 26,2±4,58 25,5±2,59

Candida albicans ATCC 885-653 со 11,7±2,07 27,7±1,63*

Примечание: * — р<0,05 при сравнении мази «Лево-меколь» с составом 1.

При оценке данных, представленных в таблице 1, следует, что изготовленный нами Состав 1 обладает довольно значительным противомикробным дей-

ствием в отношении всех исследуемых тест-штаммов. При сопоставлении Состав 1 статистически значимо превосходил по зонам задержки роста мазь «Левоме-коль» в отношении Вас. cereus ATCC 10702 и Candida albicans ATCC 885-653.

Изначальные экспериментальные раны у всех подопытных были сопоставимы по своей площади (252,4±4,85 мм2). Полученные в ходе эксперимента результаты по планиметрическому методу отражены в таблице 2.

Таблица 2

Динамика площади и скорости заживления ран (М±m)

Группы Показатель Сроки наблюдения, сутки

3 (n=50) 5 (n=40) 10(n=20) 15 (n=10)

Контрольная Процент уменьшения площади раны 21,2±4,84 44,9±3,52 78,4±3,07 88,9±2,13

Скорость заживления раны, %/сут. 10,5±0,51 12,0±0,69 10,1±0,54 2,0±0,12

Опытная Процент уменьшения площади раны 30,9±4,36 52,5±3,39 88,9±2,29* 99,5±0,05*

Скорость заживления раны, %/сут. 12,5±1,43 11,1±1,03 12,9±1,21* 1,4±0,30

Примечание: * — р<0,05 при сопоставлении контрольной группы с опытной.

Со временем во всех группах наблюдалось повышение ПУП ран. Статистически значимые различия между опытной группой и контролем наблюдались, начиная с 10 суток эксперимента.

Скорость заживления в опытной группе была устойчиво высокой на протяжении всего эксперимента, что указывает на активность разработанной комбинации в первую и вторую фазу раневого процесса.

Анализ полученных результатов микробиологического исследования ран представлен в таблице 3.

Во всех группах на 1-е сутки обсемененность ран микроорганизмами составляла в среднем 14,6±1,72х107 КОЕ/г. С течением времени во всех группах происходило снижение контаминации ран микроорганизмами. Статистически значимые различия между опытной и контрольной группой наблюдались, начиная с 8 суток эксперимента, что указывает на высокую деконтами-национную активность изучаемой комбинации.

При исследовании микропрепаратов ран во всех группах к первым суткам от момента производства раневого дефекта поверхность всей раны была выстлана мощными фибринозно-гнойными массами, в которых обнаруживалось значительное количество погибших лейкоцитов. Глубже лежащие ткани явно

Таблица 3

Динамика микробной обсемененностиран (КОЕ в 1 г ткани) (M±m)

Группы (КОЕ в 1 г ткани)

1 сут 3 сут 5 сут 8 сут 10 сут

n=10 (в каждом исследовании)

Контрольная 14,7±1,09х107 19,2±2,55х106 16,6±1,29х105 15,5±0,38х104 7,3±0,60х104

Опытная 14,6±1,95х107 13,4±2,84х106 12,9±1,57х105 9,0±2,15х104* 1,2±0,35х104*

Примечание: * -p<0,05 при сопоставлении контрольной группы с опытной.

отечны и пропитаны макрофагами и полиморфно-ядерными лейкоцитами, находящимися на различной стадии дифференциации, пучки коллагеновых волокон дезинтегрированы и отделены друг от друга инфильтратом. Кровеносные и лимфатические сосуды дилатированы. Пастозность тканей и инфильтрат в комплексе с пропитыванием эритроцитами диссеми-нировалась за пределы гнойно-воспалительного дефекта по всей толщине дермы и даже на гиподерму.

На 5-е сутки в контрольной группе гнойно-воспалительный дефект был покрыт лейкоцитарно-не-кротическим струпом, под которым располагалась грануляционная ткань, признаки эпителизации не были обнаружены. Глубокие слои дермы пастозны. В опытной группе грануляционная ткань выстлана фибрином и достаточно четко отделен грануляционным валом. В юной грануляционной ткани отмечались хорошо выраженные процессы неоангиогенеза. Грануляционная ткань пропитана нейтрофилами, лимфоцитами и макрофагами.

К 10-м суткам в контрольной группе происходила организация эпителиального вала на границе дефекта. Грануляционная ткань резко отделена от интактной дермы и пропитана лейкоцитами. В опытной группе достаточно хорошо заметны признаки эпителизации дефекта. Пропитывание поверхностных слоев дермы лейкоцитами сохранено. Вновь образовавшаяся соединительная ткань достаточно васкуляризована,

признаков пастозности нет. Реактивные изменения выражены слабее, чем в контрольной группе. Участки регенерировавшего эпителия без выраженных морфологических изменений.

С целью выявления различий в процессе репара-тивной регенерации в сопоставляемых группах нами были проведены морфометрические исследования микропрепаратов экспериментальных ран, результаты которых представлены в таблице 4.

В процессе терапии во всех группах наблюдалось увеличение количества фибробластов по сравнению с макрофагами, лимфоцитами и гранулоцитами. С 8-х суток наблюдения максимальные значения фи-бробластов были отмечены в опытной группе при сопоставлении с контрольной. Кроме того, снижение количества макрофагов (по отношению к лимфоцитам) и одновременное увеличение числа лимфоцитов (над макрофагами) в опытной группе было отмечено на 3-5-е сутки, а в контрольной — на 8-10-е сутки.

На 3-и и 5-е сутки исследования не было статистически достоверных отличий между группами по изменению клеточного индекса. На 8-е сутки исследования клеточный индекс в опытной группе был 1,5 раза больше по сравнению с контрольной группой, а на 10-е сутки — в 1,6 раза. Положительное изменение клеточного индекса в опытной группе говорит о высокой регенераторной активности разработанной

Таблица 4

Динамика состава инфильтрата ран в процессе лечения (M±m) в % (n=10)

Показатели Группы Сроки лечения, сутки

3-и 5-е 8-е 10-е

Фибробласты Контрольная 31,9±1,17 32,2±0,94 43,3±1,96 51,4±0,57

Опытная 27,0±1,92 35,3±1,25 54,3±2,12* 65,1±2,07*

Макрофаги Контрольная 20,6±1,51 21,4±1,26 18,4±1,51 14,7±1,64

Опытная 23,1±1,66 18,5±1,35 14,6±1,58* 9,1±1,37*

Лимфоциты Контрольная 17,5±1,27 19,1±2,13 16,5±2,42 15,4±1,58

Опытная 24,8±2,25* 24,8±2,89 15,0±3,37 12,3±2,26

Гранулоциты Контрольная 32,1±1,91 29,2±1,66 24,4±2,01 20,4±0,97

Опытная 24,9±2,74* 21,4±1,26* 16,1±1,45* 13,5±1,27*

Клеточный индекс Контрольная 1,06±0,034 1,10±0,027 1,51±0,041 1,85±0,027

Опытная 1,01±0,014 1,16±0,021 2,22±0,025* 2,87±0,042*

Примечание: * -p<0,05 при сопоставлении контрольной группы с опытной.

нами комбинации и о более ранней, по сравнению с контрольной группой, смене фаз раневого процесса.

Современные изыскания в области терапии раневого процесса указывают, что снижение чувствительности микроорганизмов к лекарственным средствам (особенно содержащим антибиотики) обусловлено образованием вокруг микроорганизмов биопленки, представляющей собой тонкий слой полимеров, который образует надежную броню от пагубного влияния на микроорганизмы антибиотиков, факторов иммунной системы организма. В связи с этим, действие современных антисептических препаратов зависит от их способности уничтожать биопленку. Одними из препаратов результативно разрушающим микробную биопленку являются «мирамистин» (поверхностно-активный катионный антисептик, являющийся четвертичным аммониевым соединением, обладающий широким спектром антимикробной активности в отношении аэробных и анаэробных микроорганизмов) и метронидазол (синтетический антимикробный препарат с высокой активностью в отношении анаэробных бактерий и возбудителей протозойных инфекций). Таким образом, наши результаты планиметрических, бактериологических и гистологических исследований гнойно-воспалительного процесса мягких тканей подтверждают выраженный положительный эффект от терапии раны комбинацией с мирами-стином и метронидазолом по сравнению с препаратом контрольной группы.

Заключение

1. Разработанная комбинация с мирамистином и метронидазолом обладает выраженным противовоспалительным и антимикробным действиями в отношении грамположительных и грамотрицатель-ных микроорганизмов (St. aureus ATCC 6538-P, Вас. cereus ATCC 10702, E. coli ATCC 25922, Proteus vulgaris и Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, Candida albicans ATCC 885-653), ускоряет сроки заживления гнойных ран в 1,3 раза по сравнению с мазью «Левомеколь», сохраняет высокую скорость заживления на протяжении всего срока лечения.

2. Способ приготовления предлагаемой комбинации оптимален для получения максимального терапевтического эффекта, прост и доступен для аптечных сетей.

Литература / References

2. George K. Are Quantitative Bacterial Wound Cultures Useful? Journal of Clinical Microbiology. 2014;(52):2753-2756.

3. Плотников ФВ. Комплексное лечение пациентов с гнойными ранами в зависимости от способности микроорганизмов-возбудителей формировать биопленку. Новости

7. Бабушкина ИВ. Наночастицы металлов в лечении экспериментальных гнойных ран. Саратовский научно-медицинский журнал. 2011;7(2):530—533

10. Тезина ЕЮ, Родина ОП, Водопьянова ОА, Семенова ЕФ, Моисеева ИЯ. Опыт сравнительного применения мазей «Фузимет» и «Левомеколь» в комплексном лечении ожоговых ран. Современные проблемы науки и образования. 2015;(3):12-16.

11. Яремчук АА, Хишова ОМ, Половко НП. Микробиологическое обоснование использования бензалкония хлорида в мягкой лекарственной форме для наружного применения. Вестник фармации. 2012;2(56):39-45.

14. Юшков АГ, Шульгина НА, Гущина АА, Юшков ГГ, Расулов ММ, Бенеманский ВВ, Бун ММ. К возможности выявления побочных явлений препарата «Метронидазол» (раствор для инфузий 0,5% 100 мл) в условиях эксперимента. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2012;4-2(86):216-219.

15. Суковатых БС, Бежин АИ, Панкрушева ТА, Григорьян АЮ, Иванов АВ, Жиляева ЛВ, Кобзарева ЕВ, Андрю-хина ЕГ, Дубонос АА. Оценка экспериментальной и клинической эффективности иммобилизированной формы хлоргексидина в лечении гнойных ран. Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 2016;175(1):42-47.

18. Жилина СВ. Стрептококки в этиологии гнойно-воспалительных заболеваний кожи и мягких тканей. Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2009(2):46-53.

23. Бачманов АЕ, Гридин АА, Холубкевич ЮП. Физические способы воздействия на гнойную рану в комплексном лечении больных хирургического профиля. Вестник Воронежского государственного технического университета. 2007;3(7):219-221.

24. Казарян НС, Козлов КК, Быков АЮ, Кокорин СВ, Викторов СИ. Лечение пациентов с гнойными ранами путем применения аспирационно-проточно-промывного дренажа новой конструкции. Вестник Российской академии медицинских наук. 2013(12):64-68.

25. Окулич ВК, Федянин СД. Рациональное использование антибактериальных препаратов у пациентов с гнойными ранами, фурункулёзом, фурункулами и карбункулами. Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2003;2(4):30-36.